膳食辅酶Q10和维生素E改变这些化合物在大鼠组织和线粒体中的地位
摘要
维生素E(VE)和辅酶Q(CQ)对保持线粒体的功能和完整性至关重要,这些化合物在其内膜中可见高浓度。本研究旨在检查外源给药CQ10和VE在大鼠中的相互作用。雄性斯普拉格-道利大鼠(12个月大)被喂食基本饮食(10 IU VE或6.7毫克RRR-α-生育酚当量),补充0或500毫克CQ10和0、100或1310 IU VE/kg饮食,14或28天。对肝脏、脾脏、心脏、肾脏、骨骼肌、大脑和血清的CQ10、CQ9和VE水平进行了分析。补充CQ10显著(P<0.05)提高了肝脏和脾脏(总和线粒体)以及血清中的CQ10浓度,但其他器官没有。有趣的是,与单独补充CQ10的CQ10+100 IU VE/kg饮食的大鼠在肝脏和脾脏中的CQ10水平明显较高,而补充CQ10+1310 IU VE/kg饮食的大鼠的浓度较低。正如预期的那样,膳食VE以剂量依赖的方式增加了所有器官的VE含量。然而,喂养基本饮食并补充CQ10的大鼠肝脏(总和线粒体)的VE水平明显高于未补充CQ10的大鼠。与对照组相比,补充CQ10的大鼠的肝脏和脾脏CQ9水平更高,骨骼肌较低,大脑、血清、心脏和肾脏的CQ9水平保持不变。这些数据直接证明了外源给药VE和CQ10在组织吸收和保留方面的相互作用,以及CQ10对VE的节制作用。数据还表明,膳食VE在确定外源性CQ10的组织保留率方面发挥着关键作用。
辅酶Q(CQ),也称为泛醌,是一种脂溶性化合物,由氧化还原活性喹啉体分子和由异戊二烯单位组成的疏水侧链组成。侧链中的异上腺素单位数量是特定物种的。CQ由内质网和高尔基膜中的酶在所有细胞中合成,然后输送到其他细胞器。CQ的生物合成通过甲戊酸盐途径进行(Ernster和Dallner,1995年,Maltese和Aprille,1985年),这也参与了胆固醇生物合成。CQ在人类中的主要形式是CQ10,它包含10个异丙肾上腺素单位,而啮齿动物的主要形式是CQ9,它有九个异上腺素单位。
CQ是线粒体电子传输链中必不可少的辅助因子,它接受络合物I和II中的电子(Beyer,1992年,Ernster和Dallner,1995年)。CQ还以还原形式(ubiquinol)作为抗氧化剂发挥作用,保护生物膜(Forsmark-Andree等人)。1997年,诺克等人1994)。在脂质体、低密度脂蛋白、生物膜、蛋白质和DNA中已经证明了对CQ10氧化损伤的有效保护(Forsmark等人)。1991年,Forsmark-Andree和Ernster,1994年,Stocker等人。1991年)。据报道,心肌病、退行性肌肉疾病和衰老期间的CQ10水平有所下降(Battino等人)。1995年,Kalen等人1989年,卡尔松等人1990年,莫滕森1993年)。CQ10的大部分临床工作都集中在心脏病上,特别是充血性心力衰竭和心肌病。大多数研究表明,使用CQ10治疗可以显著改善心肌功能,没有已知的不利影响(Langsjoen等人)。1994)。除了心脏病外,CQ10在线粒体疾病患者中的有益作用也得到了证明(Bresolin等人)。1988年,Ihara等人。1989年,西川等人。1989年,Shoffner等人1989年)。
维生素E(VE)是血浆、红细胞和组织中发现的主要脂溶性破链抗氧化剂,在保持生物膜完整性方面发挥着重要作用(Burton和Traber,1990年,Chow,1991年)。VE也可以直接与过氧化物和超氧化物自由基反应(Fukuzawa和Gebicki,1983年,Niki等人)。1984)。VE在功能上与一些抗氧化剂相关,包括抗坏血酸、谷胱甘肽、脂肪酸和CQ(Chan等人)。1991年,Kagan等人。1990年,Maguire等人。1992年,麦凯,1985年,尼基等人。1982年,Packer等人1997)。线粒体的内膜中都发现了高浓度的CQ和VE。CQ和VE在VE回收方面进行交互的可能性首次是在1960年代(Mellors和Tappel,1966年)。然而,关于这两种化合物相互作用的现有大部分实验证据来自体外研究(Kagan等人)。1990年,Lass和Sohal,1998年,Maguire等人。1992年,Mellors和Tappel,1966年,Stoyanovsky等人。1995年)。
一些研究审查了VE和CQ10之间的相互作用,但结果不一致。例如,Zhang等人(1995年和1996年)表明,饮食CQ只用于肝脏、脾脏和血浆,而不用于肾脏、心脏、肌肉和大脑;补充VE增加了肝脏和血浆中的内源性和外源性CQ水平,而膳食CQ10对组织VE没有影响。另一方面,Las等人(1999年)发现,口服CQ10的小鼠血清、肝脏和肾脏的CQ10水平更高,骨骼肌和肝脏线粒体的VE水平更高。他们还发现,与单独补充CQ10的小鼠相比,口服VE和CQ10的小鼠肝线粒体中的CQ10较低。为了更好地了解VE和CQ10之间的相互作用,我们研究了外源给药CQ10和VE对大鼠组织和线粒体中外源和内源CQ和VE浓度的影响。
材料和方法
化学品和试剂。
从俄亥俄州辛辛那提的Fisher Scientific购买了单碱磷酸钠和二碱性磷酸钠。HPLC级甲醇和己烷是从新泽西州吉布斯敦的EM Science购买的。乙醇(95%)是从伊利诺伊州北京的中西部谷物产品中获取的。铁氰化钾是从J.购买的。T。Baker Chemicals,新泽西州菲利普斯堡。KCl、EDTA、Nagarse、Tris-HCl、Tris碱、蔗糖、Folin的试剂、硫酸铜、酒石酸钠、碳酸钠和氢氧化钠是从圣西格玛化学品公司购买的。密苏里州路易斯。
饮食和喂养方案。
膳食成分是从宾夕法尼亚州伯利恒的Dyets购买的。基本饮食(AIN-93M)包括14.00%无维生素酪蛋白、46.57%玉米淀粉、15.50%葡萄糖、10.00%蔗糖、5.00%纤维素、4.00%大豆油、3.50%盐混合物、1.00%维生素混合物(不含VE)、0.18%DL-甲硫氨酸和0.25%胆碱比乙酸酯(Reeves等人)。1993年)。基础饮食中的大豆油(4%)提供?10 IU VE(6.7毫克RRR-α-生育酚当量)/千克饮食。饮食1是基本饮食,没有任何补充。饮食2是基本饮食,辅以500毫克CQ10/千克饮食。饮食3是基本饮食,补充了500毫克CQ10/千克饮食和100 IU VE(作为RRR-α-生育酚)/千克饮食。饮食4是基本饮食,补充了500毫克CQ10/千克饮食和1310 IU VE/kg饮食。雄性斯普拉格-道利老鼠(n = 32;12个月大;印第安纳州印第安纳波利斯的Harlan Sprague Dawley)被随机分配到四种饮食中(n = 8/组)。食物和水是临时消耗的。每组有四名老鼠在食用各自饮食2周后死亡;其余的在4周内死亡。肯塔基大学机构动物护理和使用委员会审查并批准了实验协议。
样品准备。
在每个喂养期结束时,老鼠在通过心脏穿刺抽血后死亡。肝脏、脾脏、心脏、肾脏、骨骼肌和大脑立即切除、涂抹和称重。对部分肝脏、脾脏和心脏进行加工和制备,以分离线粒体(Bhattacharya等人)。1991年)。杀死后,心脏立即被彻底切碎和孵化,在室温下用5卷0.2摩尔/升三氯化氢缓冲液,含20克/升纳加尔斯、100毫摩尔/升蔗糖、10毫摩尔/升四乙酸乙烯二胺四乙酸酯、46毫摩尔/升氯化氢和5克/升牛血清白蛋白、pH 7.4(缓冲剂A)5分钟。在没有Nagarse(Buffer B)的情况下用同一缓冲剂清洗孵化碎组织后,使用Tekmar组织化剂(Tekmar、辛辛那提、OH)用Buffer B制备了100克/升均质体。孵化后,均质酸盐在500×克处离心10分钟,上清液在12,000×克处离心10分钟。由此产生的颗粒悬浮在缓冲B中,并在12,000×g处离心10分钟。颗粒是线粒体分数,在缓冲B中重新悬浮。使用缓冲B制备肝脏和脾线粒体,无需纳加尔斯治疗。在0.05摩尔/升磷酸盐缓冲剂pH 7.4的冰冷1.55摩尔/升KCl中制备了另一种均质酸盐,用于测量CQ10、CQ9和VE的水平。
生化测量。
使用荧光探测器测量VE(α-生育酚)水平的脂质提取物,使用荧光探测器激发205纳米,发射340纳米(Hatam和Kayden,1979年)。根据Okamoto等人(1985年)的高效液相色谱程序,使用275纳米的紫外线检测测量了CQ10和CQ9的水平。使用Folin的试剂(Miller,1959年)测量了线粒体蛋白质浓度。
数据分析。
使用ANOVA分析获得的数据,然后使用Tukey的多重比较测试进行分析。使用了SYSTAT 5软件的Windows版本(SYSTAT,伊利诺伊州埃文斯顿)。
结果
CQ10和VE补充和组织CQ10浓度。
与未补充CQ10的人群相比,14或28d的CQ10补充显著(P<0.05)显著提高了肝脏、脾脏和血清中的CQ10浓度(表1)。喂食实验饮食28天的大鼠肝脏和脾脏的CQ10浓度增加幅度相对较大于喂养14天的大鼠。补充14或28天CQ10不会显著改变心脏、肾脏、骨骼肌和大脑中的CQ10水平(表1)。与整个器官的效果类似,饮食CQ10显著提高了肝脏线粒体中的CQ10水平(图1A)和脾脏(图1B),但不是心脏(图1C)。
或28 d1、2补充维生素E和辅酶Q10后大鼠组织中的辅酶Q10浓度
10E - Q | 10E + Q | 110E + Q | 1320E + Q | ||||||||||||
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14天 | 28天 | 14天 | 28天 | 14天 | 28天 | 14天 | 28天 | ||||||||
nmol/g | |||||||||||||||
组织 | |||||||||||||||
肝脏 | 30.2±6.2a | 27.8±7.0a | 749.4±140c | 1018±133c,d | 1178±172d | 1801±117e | 499±60b | 596±65b,c | |||||||
脾脏 | 4.4±0.3a | 4.18±0.3a | 10.1±0.7b | 21±2.7c | 16.7±1.8c | 27.9±2.9天 | 9.2±0.9b | 9.4±0.9b | |||||||
肾脏 | 4.3±0.8 | 4.5±1.4 | 4.7±0.5 | 5.6±0.5 | 6.3±0.3 | 6.3±0.8 | 5.2±1.1 | 5.4±0.7 | |||||||
心脏 | 22±2.3 | 17.7±1.3 | 19.1±2.5 | 23.6±2.6 | 23.9 ± 2.0 | 20.3±1.4 | 20.9 ± 2.0 | 19.5±2.5 | |||||||
肌肉 | 1.1±0.1 | 1.3±0.2 | 1.3±0.2 | 1.1±0.1 | 1.2±0.2 | 1.2±0.2 | 1.2±0.2 | 1.2±0.1 | |||||||
大脑 | 3.8±0.5 | 4.1±0.6 | 4.6±0.3 | 4.4±0.3 | 4.5±0.5 | 4.4±0.7 | 4.5±0.3 | 4.5±0.4 | |||||||
nmol/L | |||||||||||||||
血清 | 90±30a | 120±40a | 340±60b | 370±50b | 280±60b | 380±50b | 300±50b | 350±40b |
14或28天,大鼠被喂食基本饮食(10 IU维生素E/kg),无补充(10E-Q)、500毫克辅酶Q10/kg饮食(10E+Q)、100 IU维生素E加500毫克辅酶Q10/kg饮食(110E + Q)或1310 IU维生素E加500毫克辅酶Q10/kg饮食(1320E + Q)。
数据表示为±SD;n = 4。连续不同的字母表示显著差异,P<0.05。
补充CQ10和维生素E(VE)后,大鼠肝脏(A)、脾脏(B)和心脏(C)线粒体中的辅酶Q10(CQ10)水平。老鼠被喂食基本饮食(10 IU VE/kg),无补充(10E-Q)、500毫克CQ10/kg饮食(10E + Q)、100 IU VE加500毫克CQ10/kg饮食(110E + Q)或1310 IU VE加500毫克CQ10/kg饮食(1320E + Q)。条表示±SD;n = 4。不共享字母的条形码差异很大,P<0.05。
膳食VE对组织CQ10水平的影响因剂量而异;在14天或28天补充100 IU VE/kg饮食的大鼠的肝脏和脾脏(表1)明显高于对照组。另一方面,补充1310 IU VE/kg饮食的大鼠肝脏和脾脏的CQ10水平明显低于各自的对照组。与14天相比,28天补充100 IU VE/kg饮食的大鼠肝脏和脾脏的CQ10浓度增加相对较大。饮食VE在任何剂量下都没有显著改变血清、心脏、肾脏、骨骼肌肉和大脑的CQ10浓度(表1)。与整个器官的效果类似,补充100 IU VE/kg饮食显著提高了肝脏线粒体中的CQ10浓度(图1A)和脾脏(图1B),而补充1310 IU VE/kg饮食的效果正好相反。
CQ10和VE补充以及CQ9的组织水平。
在14d喂养CQ10补充饮食的大鼠的肝脏中,14天和28天喂养大鼠的脾脏中的CQ9浓度明显更高(表2)。另一方面,补充CQ10导致肌肉中的CQ9值显著下降(表2)。补充CQ10没有显著改变血清、心脏、肾脏和大脑中的CQ9水平(表2)。除肝脏外,膳食VE对分析的任何组织的CQ9水平都没有显著影响(表2)。在14天,但28天时,补充VE的大鼠肝脏中的CQ9浓度更高。
补充维生素E和辅酶Q10后大鼠组织中的辅酶Q9浓度为14或28d1,2
10E - Q | 10E + Q | 110E + Q | 1320E + Q | ||||||||||||
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14天 | 28天 | 14天 | 28天 | 14天 | 28天 | 14天 | 28天 | ||||||||
nmol/g | |||||||||||||||
组织 | |||||||||||||||
肝脏 | 1465±64a | 1500±186a | 1858 ± 63a,b | 1666±52a,b | 1899±101b | 1761±113a,b | 1906 ± 77b | 1590±164a,b | |||||||
脾脏 | 13.0 ± 2.0a | 16.6±3.4a | 19.0 ± 2.0b | 38.0±3.1c | 22.5±3.0b | 38.1±3.0c | 27.1±2.8b | 23.3±3.1b | |||||||
肾脏 | 60.5±2.0 | 54.6 ± 6.0 | 49.4±6.4 | 63.2±11.0 | 61.3±6.3 | 65.8±5.3 | 64±4.5 | 62.5± 10.0 | |||||||
心脏 | 165±7.6 | 160±10.0 | 170±23 | 198±23 | 198±12.6 | 176±11 | 173±15 | 180±25 | |||||||
肌肉 | 25.6±1.3b | 30.1±2.4b | 19.5±1.9a,b | 18.8±1.8a | 16.7±1.3a | 13.1±1.5a | 20.2±0.8a,b | 18.6±0.9a | |||||||
大脑 | 13.7±2.0 | 12.8±1.8 | 14.1±1.8 | 12.5±1.1 | 13.2±1.3 | 12.5±1.0 | 12.9±0.6 | 13.9±1.3 | |||||||
nmol/L | |||||||||||||||
血清 | 252±50.4 | 277±38 | 290±38 | 353±50 | 277±50 | 264±38 | 252±38 | 239±38 |
14或28天,大鼠被喂食基本饮食(10 IU维生素E/kg),无补充(10E-Q)、500毫克辅酶Q10/kg饮食(10E+Q)、100 IU维生素E加500毫克辅酶Q10/kg饮食(110E + Q)或1310 IU维生素E加500毫克辅酶Q10/kg饮食(1320E + Q)。
数据表示为±SD;n = 4。连续不同的字母表示显著差异,P<0.05。
CQ10和VE补充以及VE的组织水平。
喂食CQ10补充饮食的老鼠在两种同质体中的肝VE水平都明显更高(图2A)和线粒体(图3)补充CQ10对脾脏中VE的浓度没有显著影响(图2B),血清(图2C),心脏(图2D),肾脏(图4A),骨骼肌(图4B)或大脑(图4C)。
辅酶Q10(CQ10)和VE补充后,大鼠肝脏(A)、脾脏(B)、血清(C)和心脏(D)中的维生素E(VE)水平。老鼠被喂食基本饮食(10 IU VE/kg),无补充(10E-Q)、500毫克CQ10/kg饮食(10E + Q)、100 IU VE加500毫克CQ10/kg饮食(110E + Q)或1310 IU VE加500毫克CQ10/kg饮食(1320E + Q)。条表示±SD;n = 4。不共享字母的条形码差异很大,P<0.05。
辅酶Q10(CQ10)和VE补充后,大鼠肝脏线粒体中的维生素E(VE)水平。老鼠被喂食基本饮食(10 IU VE/kg),无补充(10E-Q)、500毫克CQ10/kg饮食(10E + Q)、100 IU VE加500毫克CQ10/kg饮食(110E + Q)或1310 IU VE加500毫克CQ10/kg饮食(1320E + Q)。条表示±SD;n = 4。不共享字母的条形码差异很大,P<0.05。
辅酶Q10(CQ10)和VE补充后,大鼠肾脏(A)、骨骼肌(B)和大脑(C)中的维生素E(VE)水平。老鼠被喂食基本饮食(10 IU VE/kg),无补充(10E-Q)、500毫克CQ10/kg饮食(10E + Q)、100 IU VE加500毫克CQ10/kg饮食(110E + Q)或1310 IU VE加500毫克CQ10/kg饮食(1320E + Q)。条表示±SD;n = 4。不共享字母的条形码差异很大,P<0.05。
正如预期的那样,14或28天膳食VE补充会增加肝脏的VE浓度(图2A),脾脏(图2B),血清(图2C),心脏(图2D),肾脏(图4A),骨骼肌(图4B)和大脑(图4C)以剂量依赖的方式对大鼠进行。同样,补充VE以同样的方式增加了肝线粒体的VE水平(图3)
讨论
同意涉及CQ10相对短期管理的研究(Lonnrot等人)。1998年,Reahal和Wrigglesworth,1992年,Yuzuriha等人。1983年、张等人、1995年和1996年),我们还发现CQ10补充大鼠血清、肝脏和脾脏的CQ10浓度显著增加,但心脏、肾脏、骨骼肌肉和大脑的浓度没有显著增加。然而,在口服每天200毫克CQ10/千克体重2个月后,12个月大鼠的大脑皮层线粒体CQ10浓度显著增加(Matthews等人,1998年),24个月大鼠口服CQ10后肾脏线粒体浓度在13周内每天剂量123毫克/千克(Lass等人)。1999)。因此,长期服用高剂量的CQ10似乎可以使其吸收肝脏、脾脏和血清以外的其他器官。
本研究考察了膳食VE是否影响CQ10的组织保留。我们喂养了三种不同水平的VE和500毫克CQ10/千克饮食,发现补充100 IU VE/kg的大鼠在肝脏和脾脏的均质和线粒体中CQ10明显多,而补充1310 IU VE/kg的大鼠的浓度较低,与未接受VE补充的对照组相比。我们的研究中发现的中度水平的增强效应和高水平VE对组织CQ10的抑制作用的机制尚不清楚。然而,由于这两种化合物都是脂质可溶性的,它们可能具有类似的吸收/运输机制。VE剂量的适度增加可能会提高CQ的吸收和/或结合,而VE的高水平可能会与CQ10竞争,从而抑制其吸收、运输和/或吸收。
CQ通过中价通路在所有细胞中合成(Ernster和Dallner,1995年;马耳他语和Aprille,1985年),啮齿动物的主要CQ同系物是CQ9。在本研究中,我们研究了饮食CQ10和VE对内源性CQ 9的影响,发现补充CQ10的大鼠肝脏、脾脏和骨骼肌的CQ9水平显著提高。CQ10给药导致肝脏和脾脏(唯一一个也显示CQ10增加的器官)中CQ9升高的发现表明,CQ10可以避免CQ9的损失(利用),或者CQ10可以作为大鼠CQ9的前体。
α-生育酚可能与超氧化物和过氧化物自由基反应,形成α-生育酚自由基(Fukuzawa和Gebicki,1983年,McCay,1985年,Niki等人,1982年和1984年)。许多研究表明,还原抗坏血酸(McCay,1985年,Niki等人,1982年)、谷胱甘肽(Chan等人)。1991年,Niki等人,1982年),脂酸(Packer等人,1997年)和降低CQ(ubiquinol)(Kagan等人)。1990年,Las和Sohal,1998年,Maguire等人。1992年,斯托亚诺夫斯基等人,1995年)可以从生育酚氧基中再生α-生育酚,从而避免或防止其丢失。补充CQ10的大鼠在肝脏均质物和线粒体中的VE水平明显高于未补充CQ10的大鼠,为体内这种相互作用提供了实验证据。Lass等人(1999年)也取得了类似结果,他们报告称,补充CQ10后,小鼠肝脏和骨骼肌肉线粒体的VE水平有所提高。
这项研究的结果为外源性给药VE和CQ10在吸收和组织保留方面的体内相互作用提供了实验证据。证据还指出,这两种氧化还原化合物在内源性层面上与肝脏和脾脏的相互作用。饮食中度VE水平可以增强饮食CQ10在这些器官中的保留率,而高水平VE会产生相反的效果。这些数据表明,VE是CQ10状态的关键决定因素。获得的数据还表明,CQ10对VE有节余作用,可能通过从生育酚氧基再生VE。必须进一步研究相互作用对VE和CQ10其他功能的影响。
引用的文献
作者注释
部分在实验生物学99上发表,1999年4月,华盛顿特区[易卜拉欣,W.,巴加万,H.N.,乔普拉,R.K。& 周,C.K。(1999)维生素E和辅酶Q10在大鼠组织和线粒体中的相互作用。FASEB J.13:A535(abs.)]。